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引物設(shè)計(jì):打開專門的引物設(shè)計(jì)軟件,比如 Primer Premier。先導(dǎo)入目的基因和線性化載體的序列文件,在軟件中找到引物設(shè)計(jì)功能模塊。設(shè)計(jì)引物時(shí),一定要在目的基因兩端添加與線性化載體末端 15 - 25bp 的同源臂序列,確保它們能配對(duì)。同時(shí),仔細(xì)調(diào)整引物的 Tm 值,盡量讓上下游引物的 Tm 值相差不超過 2℃,并且保證引物的 GC 含量在 40% - 60% 之間,避免引物形成二聚體或發(fā)夾結(jié)構(gòu)。設(shè)計(jì)完成后,將引物序列導(dǎo)出并記錄好。
準(zhǔn)備 PCR 反應(yīng)體系:在干凈的 PCR 管中,依次加入以下成分:模板 DNA(即目的基因模板)、dNTP Mix(提供合成 DNA 的原料)、剛剛設(shè)計(jì)好的上下游引物、Taq DNA 聚合酶(催化 DNA 合成)、PCR 緩沖液(為反應(yīng)提供合適的環(huán)境),最后用超純水補(bǔ)齊反應(yīng)體系至合適體積(一般為 20 - 50μL)。添加試劑時(shí),建議使用帶濾芯的槍頭,防止污染,并且每加完一種試劑,及時(shí)蓋上管蓋。
進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增:將配好的 PCR 反應(yīng)管放入 PCR 儀中,按照預(yù)先設(shè)定好的程序進(jìn)行擴(kuò)增。一般的程序包括:94℃預(yù)變性 5 分鐘,使 DNA 雙鏈充分解開;然后進(jìn)入循環(huán)階段,94℃變性 30 秒,讓 DNA 雙鏈再次分開;根據(jù)引物的 Tm 值設(shè)定退火溫度(通常比 Tm 值低 5℃左右),退火 30 秒,使引物與模板結(jié)合;72℃延伸 1 分鐘 /kb(根據(jù)目的基因片段長(zhǎng)度調(diào)整),讓 Taq 酶合成新的 DNA 鏈;重復(fù)循環(huán) 30 - 35 次;最后 72℃延伸 10 分鐘,確保 DNA 合成。
檢測(cè)與純化 PCR 產(chǎn)物:PCR 結(jié)束后,取 5 - 10μL 的 PCR 產(chǎn)物,與適量的上樣緩沖液混合,然后加到瓊脂糖凝膠的加樣孔中進(jìn)行電泳檢測(cè)。電泳結(jié)束后,在凝膠成像系統(tǒng)下觀察,確認(rèn) PCR 產(chǎn)物的片段大小是否正確。如果片段大小正確,就使用 DNA 純化試劑盒對(duì) PCR 產(chǎn)物進(jìn)行純化。按照試劑盒說明書的步驟,先加入結(jié)合緩沖液,使 DNA 結(jié)合到吸附柱上,然后依次進(jìn)行洗滌、離心等操作,去除引物、dNTP 等雜質(zhì),最后用適量的洗脫緩沖液將純化后的目的基因片段洗脫下來,收集到干凈的離心管中備用。
根據(jù)載體選擇線性化方法:如果載體上有合適的單一限制性內(nèi)切酶識(shí)別位點(diǎn),就選擇對(duì)應(yīng)的限制性內(nèi)切酶進(jìn)行酶切。比如,載體上有 EcoR I 的識(shí)別位點(diǎn),就準(zhǔn)備 EcoR I 限制性內(nèi)切酶、相應(yīng)的緩沖液和載體 DNA。在離心管中依次加入載體 DNA、限制性內(nèi)切酶、緩沖液,用超純水補(bǔ)齊體積,輕輕混勻后,將離心管放入合適溫度(一般為 37℃)的恒溫金屬浴或水浴鍋中,孵育 2 - 4 小時(shí),使酶切反應(yīng)充分進(jìn)行。
若載體無合適酶切位點(diǎn):可以采用 PCR 擴(kuò)增的方式制備線性化載體。設(shè)計(jì)引物時(shí),引物的 5' 端要包含與載體兩端互補(bǔ)的序列,3' 端則根據(jù)需要設(shè)計(jì)合適的序列。然后按照與擴(kuò)增目的基因類似的 PCR 反應(yīng)體系和程序進(jìn)行擴(kuò)增,得到線性化的載體片段。
線性化載體的檢測(cè)與純化:酶切或 PCR 擴(kuò)增完成后,同樣通過瓊脂糖凝膠電泳對(duì)線性化載體進(jìn)行分離,觀察載體是否線性化。確認(rèn)線性化成功后,使用 DNA 純化試劑盒對(duì)線性化載體進(jìn)行純化,去除未線性化的載體和其他雜質(zhì),收集純化后的線性化載體備用。
準(zhǔn)備反應(yīng)體系:按照無縫克隆試劑盒的說明書,在干凈的離心管中依次加入純化后的目的基因片段、線性化載體、重組酶混合液、反應(yīng)緩沖液。注意各成分的加入量要準(zhǔn)確,一般可以使用移液槍的最小量程檔進(jìn)行精確吸取。加完所有成分后,用手指輕彈離心管底部,使反應(yīng)液充分混勻,避免產(chǎn)生氣泡。
進(jìn)行反應(yīng):將混合好的反應(yīng)體系放入恒溫金屬浴或水浴鍋中,在 50℃條件下孵育 30 分鐘 - 1 小時(shí)。在反應(yīng)過程中,盡量不要移動(dòng)反應(yīng)管,以免影響反應(yīng)效果。
制備感受態(tài)細(xì)胞:可以購(gòu)買商品化的感受態(tài)細(xì)胞(如 DH5α等),也可以自己制備。如果是自己制備,一般采用化學(xué)法,將對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)菌培養(yǎng)物用氯化鈣等試劑處理,使細(xì)菌處于一種容易吸收外源 DNA 的狀態(tài),即感受態(tài)。制備好的感受態(tài)細(xì)胞要保存在 - 80℃冰箱中,使用時(shí)迅速取出并置于冰上解凍。
進(jìn)行轉(zhuǎn)化:取 50 - 100μL 的感受態(tài)細(xì)胞,加入 5 - 10μL 的無縫克隆反應(yīng)產(chǎn)物,輕輕混勻后,冰浴 30 分鐘,讓 DNA 充分吸附在細(xì)胞表面。然后將離心管放入 42℃水浴中熱激 45 - 60 秒,使細(xì)胞瞬間吸收 DNA,接著迅速將離心管放回冰浴中 2 - 3 分鐘,穩(wěn)定細(xì)胞狀態(tài)。
復(fù)蘇與篩選:在離心管中加入 500 - 1000μL 不含抗生素的液體培養(yǎng)基(如 LB 培養(yǎng)基),將離心管置于恒溫?fù)u床中,37℃、150 - 200rpm 振蕩培養(yǎng) 1 小時(shí),讓細(xì)胞復(fù)蘇并表達(dá)抗生素抗性基因。培養(yǎng)結(jié)束后,將菌液離心,棄去部分上清,留下適量菌液(一般 100 - 200μL),用槍頭輕輕吹打混勻后,涂布在含有相應(yīng)抗生素的固體培養(yǎng)基上。將培養(yǎng)皿倒置,放入 37℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜,第二天觀察菌落生長(zhǎng)情況。
陽(yáng)性克隆驗(yàn)證:挑取單菌落,接種到含有相應(yīng)抗生素的液體培養(yǎng)基中,37℃振蕩培養(yǎng) 4 - 6 小時(shí)。然后取少量菌液進(jìn)行菌落 PCR,初步判斷克隆是否正確。如果菌落 PCR 結(jié)果顯示有條帶且大小正確,再進(jìn)一步進(jìn)行限制性內(nèi)切酶酶切鑒定或 DNA 測(cè)序。將菌液送去測(cè)序公司進(jìn)行 DNA 測(cè)序,拿到測(cè)序結(jié)果后,與目的基因和載體的原始序列進(jìn)行比對(duì),確認(rèn)目的基因是否準(zhǔn)確無誤地連接到載體上,只有驗(yàn)證正確的陽(yáng)性克隆才能用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
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