ELISA 的技術(shù)要點(diǎn)包括三個(gè)方面：試劑的制備、反應(yīng)條件的選擇和操作的標(biāo)準(zhǔn)化。

一、試劑的制備

ELISA 的主要試劑為固相的抗原或抗體、酶標(biāo)記的抗原或抗體和與標(biāo)記酶直接關(guān)聯(lián)的酶反應(yīng)底物。以下敘述這些試劑的原料和制備方法。

（一）固相載體

可作 ELISA 中載體的物質(zhì)很多，常用的是聚苯乙烯。聚苯乙烯具有較強(qiáng)的吸附蛋白質(zhì)的性能，抗體或蛋白質(zhì)抗原吸附其上后保留原來(lái)的免疫活性。聚苯乙烯為塑料，可制成各種形式。在 ELISA 測(cè)定過(guò)程中，它作為載體和容器，不參與化學(xué)反應(yīng)。加之它的價(jià)格低廉，所以被普遍采用。

ELISA 載體的形狀主要有三種：小試管、小珠和微量反應(yīng)板。小試管的特點(diǎn)是還能兼作反應(yīng)的容器，后放入分光光度計(jì)中比色。小珠一般為直徑 0.6 cm 的圓球，表面經(jīng)磨砂處理后吸附面積大增加。如用特殊的洗滌器，在洗滌過(guò)程中使圓珠滾動(dòng)淋洗，效果更好。常用的載體為微量反應(yīng)板，于 ELISA 測(cè)定的產(chǎn)品也稱為 ELISA 板，通用的標(biāo)準(zhǔn)板形是 8×12 的 96 孔式。為便于作少量標(biāo)本的檢測(cè)，有制成 8 聯(lián)或 12 聯(lián)孔條的，放入座架后，大小與標(biāo)準(zhǔn) ELISA 板相同。ELISA 板的特點(diǎn)是可以同時(shí)進(jìn)行大量標(biāo)本的檢測(cè)，并可在特定的比色計(jì)上迅速讀出結(jié)果?，F(xiàn)在已有多種自動(dòng)化儀器用于微量反應(yīng)板型的 ELISA 檢測(cè)，包括加樣、洗滌、保溫、比色等步驟，對(duì)操作的標(biāo)準(zhǔn)化極為有利。

良好的 ELISA 板應(yīng)該是吸附性能好，空白值低，孔底透明度高，各板之間和同一板各孔之間性能相近。聚苯乙烯 ELISA 板由于配料的不同和制作工藝的差別，各種產(chǎn)品的質(zhì)量差異很大。因此每一批號(hào)的聚苯乙烯制品在使用前須檢查其性能。常用的檢查方法為：以一定濃度的人 IgG（一般為 10ng/ml）包被 ELISA 板各孔后，每孔內(nèi)加入適當(dāng)稀釋的酶標(biāo)抗人 IgG 抗人 IgG 抗體，保溫后洗滌，加底物顯色，終止酶反應(yīng)后分別測(cè)每孔溶液的吸光度?？刂品磻?yīng)條件，使各讀數(shù)在 0.8 左右。計(jì)算所有讀數(shù)的平均值。所有單個(gè)讀數(shù)與平均讀數(shù)之差應(yīng)小于 10％。

與聚苯乙烯類似的塑料為聚氯乙烯。作為 ELISA 固相載體，聚氯乙烯板的特點(diǎn)為質(zhì)軟板薄，可切割，價(jià)廉、但光潔度不如聚苯乙烯板。聚氯乙烯對(duì)蛋白質(zhì)的吸附性能比聚苯乙烯高，但空白值有時(shí)也略高。

為比較不同固相在某一 ELISA 測(cè)定中的優(yōu)劣，可用以下方法加以檢驗(yàn)：用其它免疫學(xué)測(cè)定方法選出一個(gè)典型的陽(yáng)性標(biāo)本和一個(gè)典型的陰性標(biāo)本。將它們分別進(jìn)行一系列稀釋后，在不同的固相載體上按預(yù)定的 ELISA 操作步驟進(jìn)行測(cè)定，然后比較測(cè)定結(jié)果。在哪一種載體上陽(yáng)性結(jié)果與陰性結(jié)果判別大，這種載體就是這一 ELISA 測(cè)定的合適的固相載體。

除塑料制品外，固相酶免疫測(cè)定的載體還有兩種材料：一是微孔濾膜，如硝酸纖維素膜、尼龍膜等，這類測(cè)定形式將在本章第五節(jié)「膜載體的酶免疫測(cè)定」中介紹。另一種載體是以含鐵的磁性微粒制作的，反應(yīng)時(shí)固相微粒懸浮在溶液中，具有液相反應(yīng)的速率，反應(yīng)結(jié)束后用磁鐵吸引作為分離的手段，洗滌也十分方便，但需配備特殊的儀器。

（二）抗原和抗體

在 ELISA 實(shí)施過(guò)程中，抗原和抗體的質(zhì)量是實(shí)驗(yàn)是否成功的關(guān)鍵因素。本法要求所用抗原純度高，抗體效價(jià)高、親和力強(qiáng)。

ELISA 所用抗原有三個(gè)來(lái)源：天然抗原、重組抗原和合成多肽抗原。天然抗原取材于動(dòng)物組織或體液、微生物培養(yǎng)物等，一般含有多種抗原成分，需經(jīng)純化，提取出特定的抗原成分后才可應(yīng)用，因此也稱提純抗原（purifiedantigen）。重組抗原（recombinantantigen）和多肽抗原（peptideantigen）均為人工合成品，使用安全，而且純度高，干擾物質(zhì)少。因此雖然制備合成抗原有較高的技術(shù)難度且要求較為昂貴的儀器設(shè)備和試劑，其應(yīng)用仍十分普遍，特別是對(duì)那些天然抗原不易得到的試驗(yàn)，更顯出其獨(dú)到之處。

用于 ELISA 的抗體有多克隆的和單克隆的。抗血清成分復(fù)雜，應(yīng)從中提取 IgG 才可用于包被固相或酶標(biāo)記。含單克隆抗體的小鼠腹水中的特異性抗體含量較高，有時(shí)可適當(dāng)稀釋后直接進(jìn)行包被。制備酶結(jié)合物用的抗體的質(zhì)量往往要求有較高的純度。經(jīng)硫酸銨鹽析純化的 IgG 可進(jìn)一步用各種分子篩層析提純。也可用親和層析法提純特異性 IgG，如用酶消化 IgG 后提取的 Fab 片段，則效果更好。

（三）免疫吸附劑

固相的抗原或抗體稱為免疫吸附劑。將抗原或抗體固相化的過(guò)程稱為包被（coating）。由于載體的不同，包被的方法也不同。如以聚苯乙烯 ELISA 板為載體，通常將抗原或抗體溶于緩沖液（常用的為 pH9.6 的碳酸緩沖液）中，加于 ELISA 板孔中在 4℃ 過(guò)夜，經(jīng)清洗后即可應(yīng)用。如果包被液中的蛋白質(zhì)濃度過(guò)低，固相載體表面有能被此蛋白質(zhì)*覆蓋，其后加入的血清標(biāo)本和酶結(jié)合物中的蛋白質(zhì)也會(huì)部分地吸附于固相載體表面，后產(chǎn)生非特異性顯色而導(dǎo)致本底偏高。在這種情況下，如在包被后再用 1％～5％ 牛血清白蛋白包被一次，可以消除這種干擾。這一過(guò)程稱為封閉（blocking）。包被好的 ELISA 板在低溫可放置一段時(shí)間而不失去其免疫活性。

（四）酶和底物

ELISA 中所用的酶要求純度高、催化反應(yīng)的轉(zhuǎn)化率高、專一性強(qiáng)、性質(zhì)穩(wěn)定、來(lái)源豐富、價(jià)格不貴、制備成的酶標(biāo)抗體或抗原性質(zhì)穩(wěn)定，繼續(xù)保留著它的活性部分和催化能力。好在受檢標(biāo)本中不存在與標(biāo)記酶相同的酶。另外它的相應(yīng)底物應(yīng)易于制備和保存，價(jià)格低廉，有色產(chǎn)物易于測(cè)定，光吸收高。ELISA 中常用的酶為辣根過(guò)氧化酶（HRP）和從牛腸粘膜或大腸桿菌提取的堿性磷酸酶（AP）。

HRP 在蔬菜作物辣根中含量很高，純化方法也不復(fù)雜。它是一種糖蛋白，含糖量約 18％；分子量為 44kD；是一種復(fù)合酶，由主酶（酶蛋白）和輔基（亞鐵血紅素）結(jié)合而成的一種卟啉蛋白質(zhì)。主酶為無(wú)色糖蛋白，在 275nm 波長(zhǎng)處有高吸收峰；輔基是深棕色的含鐵卟啉環(huán)，在 403nm 波長(zhǎng)處有高吸收峰。HRP 催化反應(yīng)：

DH2 + H2O2—— D +2 H2O

上式中 DH2 為供氫體，H2O2O 為受氫體。HRP 對(duì)受氫體的專一性很高，除 H2O2 外，僅作用于小分子醇的過(guò)氧化物和尿素的過(guò)氧化物。后者為固體，作為試劑較 H2O2 方便。許多化合物可作為 HRP 的供氧體，在 ELISA 中常用的供氫體底物為鄰苯二胺（orthopenylenediamine，OPD）、四甲基聯(lián)苯胺（3，3'，5，5'-tetramethylbenzidine，TMB）和 ABTS[2，2'-azino-bis(3-ethyl-benzthiazolinesulfonate-6)]。

OPD 為在 ELISA 中應(yīng)用多的底物，靈敏度高，比色方便。其缺點(diǎn)是配成應(yīng)用液后穩(wěn)定性差，而且具有致異變性。TMB 無(wú)此缺點(diǎn)。TMB 經(jīng)酶作用后由無(wú)色變藍(lán)色，目測(cè)對(duì)比鮮明；加酸停止酶反應(yīng)后變黃色，可在比色計(jì)中定量；因此應(yīng)用日見(jiàn)增多。ABTS，雖然靈敏度不如 OPD 和 TMB，但空白值很低。

HRP 的純度用 RZ（ReinheitZahl，意為純度數(shù)）表示，是 403nm 的吸光度與 280nm 的吸光度之比，高純度的 HRP 的 RZ≥3.0。應(yīng)注意的是酶變性后，RZ 可不變而活力降低，故重用酶制劑時(shí)更重要的指標(biāo)為活力。酶活力以單位表示：1 min 將 1μmol 的底物轉(zhuǎn)化為產(chǎn)物的酶量為 1 個(gè)單位。

在 ELISA 中另一常用的酶為堿性磷酸酶。從大腸桿菌提取的 AP 分子量為 80kD，酶作用的適 pH 為 8.0；用小牛腸粘膜提取的 AP 分子量為 100kD，適 pH 為 9.6。一般采用對(duì)硝基苯磷酸酯（p-nitrophenylphosphate，p-NPP）作為底物。它可制成片狀試劑，使用方便。產(chǎn)物為黃色的對(duì)硝基酚，在 405nm 有吸收峰。用 NaOH 終止酶反應(yīng)后，黃色可穩(wěn)定一段時(shí)間。

在 ELISA 中應(yīng)用 AP 系統(tǒng)，其敏感性一般高于應(yīng)用 HRP 系統(tǒng)，空白值也較低。但由于 AP 較難得到高純度制劑，穩(wěn)定性較 HRP 低，價(jià)格較 HRP 高，制備酶結(jié)合物時(shí)得率較 HRP 低等原因，國(guó)內(nèi)在 ELISA 中一般均采用 HRP。

除 HRP 和 AP 以外，在商品 ELISA 試劑中應(yīng)用的酶尚有葡萄糖氧化酶、β-半乳糖苷酶和脲酶等。

β-半乳糖苷酸的底物常用 4-甲基傘基-β-D 半乳糖苷（4-mehtyumbelliferyl-β-D-galactoside），經(jīng)酶水解后產(chǎn)生熒光物質(zhì) 4-甲基傘酮（4-mehtylumbelliferone），可用熒光計(jì)檢測(cè)。

熒光的放大作用大大提高了方法的敏感度。AP 也可應(yīng)用可產(chǎn)生熒光的傘基磷酸酯作底物。其缺點(diǎn)是需要熒光計(jì)測(cè)定，而且如用固相載體直接作為測(cè)定容器，此載體不可發(fā)出熒光。脲酶的特點(diǎn)是酶作用后反應(yīng)液發(fā)生 pH 改變，可使指示劑變色；另外，在人體內(nèi)沒(méi)有內(nèi)源酶（酶的化學(xué)發(fā)光底物見(jiàn)第十八章）。

（五）結(jié)合物

酶標(biāo)記的抗原或抗體稱為結(jié)合物（conjugate）?？乖捎诨瘜W(xué)結(jié)構(gòu)不同，可用不同的方法與酶結(jié)合。如為蛋白質(zhì)抗原，基本上可參考抗體酶標(biāo)記的方法。制備抗體酶結(jié)合物的方法通常有以下幾種。

1．戊二醛交聯(lián)法戊二醛是一種雙功能團(tuán)試劑，可以使酶與蛋白質(zhì)或其他抗原的氨基通過(guò)它而偶聯(lián)。戊二醛交聯(lián)可用一步法（如連接 AP），也可用二步法（如連接 HRP）。舉例如下：

2～5 mg 純抗體與 5 mgAP 混合于 0.1mol/LpH6.8 的磷酸緩沖液 1 ml 中，4℃ 下對(duì)同上緩沖液透析平衡。磁力攪拌下，緩慢加入 1％ 戊二醛 0.05 ml，在室溫下放置 2 小時(shí)。在 4℃ 下對(duì) 0.05mol/LpH8.0Tris 緩沖液透析平衡，即得酶標(biāo)抗體。

辣根過(guò)氧化物酶可溶解于 50％ 飽和度硫酸銨中。用上法交聯(lián)后可用 50％ 飽和度硫酸銨沉淀酶標(biāo)抗體，棄去上清中游離酶。

戊二醛一步法操作簡(jiǎn)便、有效，而且重復(fù)性好。缺點(diǎn)是交聯(lián)時(shí)分子間的比例不嚴(yán)格，大小也不一，影響效果。

制備 HRP 抗體結(jié)合物也可用二步法，即先將 HRP 與戊二醛作用，透析除去戊二醛，在 pH9.5 緩沖液中再與抗體作用而形成酶標(biāo)抗體。此法的效率可高于一步法 10 倍左右。

2．過(guò)碘酸鹽氧化法本法只用于 HRP 的交聯(lián)。該酶含 18％ 碳水化合物，過(guò)碘酸鹽將其分子表面的多糖氧化為醛基。用硼氫化鈉（NaBH4）中和多余的過(guò)碘酸。酶上的醛根很活潑，可與蛋白質(zhì)結(jié)合，形成摩爾比例結(jié)合的酶標(biāo)結(jié)合物。有人認(rèn)為此法為辣根過(guò)氧化物酶交聯(lián)有效的方法。但也有只認(rèn)為由于所用試劑較為劇烈，各批實(shí)驗(yàn)結(jié)果不易重復(fù)。

按以上方法制備的結(jié)合物一般混有未結(jié)合的酶和抗體。理論上結(jié)合物中混有游離酶不影響 ELISA 中后的酶活性測(cè)定，因經(jīng)過(guò)洗滌，非特異性吸附于固相上的游離酶已被洗去。但游離的抗體則會(huì)與酶標(biāo)抗體競(jìng)爭(zhēng)相應(yīng)的固相抗原，因而減低結(jié)合到固相上的酶標(biāo)抗體量。因此制備的結(jié)合物應(yīng)予以純化。純化的方法較多，分離大分子混合物的方法均可應(yīng)用。硫酸銨鹽析法操作簡(jiǎn)便，但效果不如用 SephadexG-200 凝膠過(guò)濾的好。

二、適工作濃度的選擇

在建立某一 ELISA 測(cè)定中，應(yīng)對(duì)包被抗原或抗體的濃度和酶標(biāo)抗原或抗體的濃度予以選擇，以達(dá)到合適的測(cè)定條件和節(jié)省測(cè)定費(fèi)用。下面以間接法測(cè)抗體和夾心法測(cè)抗原為例，介紹適工作濃度的選擇方法。

（一）間接法測(cè)抗體

1．酶標(biāo)抗抗體工作濃度的選擇

（1）用 100ng/ml 人 IgG 進(jìn)行包被，洗滌。

（2）將酶標(biāo)抗人 IgG 用稀釋液作一系列稀釋后分別加入已包被的孔中，保溫、洗滌。

（3）加底物顯色。加酸終止反應(yīng)后，讀取吸光度（A），繪制曲線如圖 15-10。讀取 A 值在 1.0 時(shí)的酶標(biāo)抗體稀釋度，作為酶標(biāo)抗體的工作濃度。該酶標(biāo)抗人 IgG 的工作濃度應(yīng)為 1/1600。

2．棋盤滴定法選擇包被抗原工作濃度

（1）用包被液將抗原作一系列稀釋后進(jìn)行包被，洗滌。

（2）將強(qiáng)陽(yáng)性參考血清、弱陽(yáng)性參考血清和陰性參考血清用稀釋液作 1:100 稀釋，加樣，保溫，洗滌。

（3）加按工作濃度稀釋的酶標(biāo)抗人 IgG 抗體，保溫，洗滌。

（4）加底物顯色。加酸終止反應(yīng)后讀取 A 值。

（5）選擇強(qiáng)陽(yáng)性參考血清的 A 值為 0.8 左右、陰性參考血清的 A 值小于 0.1 的包被抗的的稀釋度作為工作濃度。表 15-1 為本例的測(cè)定結(jié)果，表中數(shù)字為 A 值。從表中可見(jiàn) 1:200 為舒適的工作濃度。

表 15-1 間接 ELISA 法包被抗原工作濃度的選擇

各類血清 抗原稀釋度

1:50 1:100 1:200 1:400 1:800

強(qiáng)陽(yáng)性 1.20 1.04 0.84 0.68 0.42

弱陽(yáng)性 0.64 0.41 0.30 0.22 0.19

陰性 0.23 0.13 0.08 0.66 0.05

稀釋液 0.09 0.02 0.02 0.02 0.04

（二）夾心法測(cè)抗原

在夾心法 ELISA 法中可用棋盤滴定法同時(shí)選擇包被抗體和酶標(biāo)抗體的工作濃度，舉例如下：

夾心 ELISA 包被抗體和酶標(biāo)抗體工作濃度的選擇

包被抗體的濃度及 參考抗原

酶標(biāo)抗體稀釋度 強(qiáng)陽(yáng)性（25ng/ml）弱陽(yáng)性（1.5ng/ml）陰性

10 μg/ml

1:1000 1.17 0.15 0.09

1:5000 0.46 0.03 0

1:25000 0.12 0 0

1 μg/ml

1:1000 ＞2 0. 25 0.10

1:5000 0.91 0.12 0.01

1:25000 0.25 0.01 0

0.1 μg/ml

1:1000 0.42 0.13 0.13

1:5000 0.11 0.03 0.02

1:25000 0.03 0 0

（1）抗體免疫球蛋白用包被緩沖液稀釋至蛋白濃度為 10、1 和 0.1 μg/ml，分別在 ELISA 板上進(jìn)行包被，每一濃度包括三個(gè)縱行，洗滌。

（2）在一個(gè)橫行各包被孔中加入強(qiáng)陽(yáng)性抗原液，另一橫行加入弱陽(yáng)性抗原液，第三橫行加入陰性對(duì)照液，保溫，洗滌。

（3）將酶標(biāo)抗體用稀釋液稀釋成三個(gè)濃度，例如 1:1000、1:5000 和 1:25000。分別加入每一包被濃度的一個(gè)縱行中，保溫，洗滌。

（4）加底物顯色。加酸終止反應(yīng)后，讀取 A 值。

（5）以強(qiáng)陽(yáng)性抗原的 A 值在 0.8 左右、陰性參考的 A 值小于 0.1 的條件作適條件，據(jù)此選擇包被抗體和酶標(biāo)抗體的工作濃度。從表 15-2 可看出包被抗體濃度可選用 1 μg/ml，酶標(biāo)抗體的稀釋度可選為 1:5000。為了進(jìn)一步節(jié)省試劑，可以此濃度為基點(diǎn)，縮小間距再做進(jìn)一步的棋盤滴定。

三、測(cè)定方法的標(biāo)準(zhǔn)化

要使 ELISA 測(cè)定得到準(zhǔn)確的結(jié)果，不論是定性的還是定量的，必須嚴(yán)格按照規(guī)定的方法制備試劑和實(shí)施測(cè)定。主要試劑的制備要點(diǎn)已如前述，其他一般性試劑，如包被緩沖液、洗滌液、標(biāo)本稀釋液、結(jié)合物稀釋液、底物工作液和酶反應(yīng)終止液等，配制時(shí)不可掉以輕心。緩沖液可于冰箱中短期保存，使用前應(yīng)觀察是否變質(zhì)。蒸餾水的質(zhì)量在 ELISA 中也至關(guān)重要，好使用新鮮重蒸餾的。不合格的蒸餾水可使空白值升高。

測(cè)定的實(shí)施中，應(yīng)力求各個(gè)步驟操作的標(biāo)準(zhǔn)化，下面以板式 ELISA 為例，介紹有關(guān)注意事項(xiàng)。

（一）加樣

在 ELISA 中除了包被外，一般需進(jìn)行 45 加樣。在定性測(cè)定中有時(shí)不強(qiáng)調(diào)加樣量的準(zhǔn)確性，例如規(guī)定為加樣一滴。此時(shí)應(yīng)該使用相同口徑的滴管，保持準(zhǔn)確的加樣姿勢(shì)，使每滴液體的體積基本相同。在定量測(cè)定中則加樣量應(yīng)力求準(zhǔn)確。標(biāo)本和結(jié)合物的稀釋液應(yīng)按規(guī)定配制。加樣時(shí)應(yīng)將液體加在孔底，避免加在孔壁上部，并注意不可出現(xiàn)氣泡。

（二）保溫

在 ELISA 中一般有二次抗原抗體反應(yīng)，即加標(biāo)本后和加結(jié)合物后，此時(shí)反應(yīng)的溫度和時(shí)間應(yīng)按規(guī)定的要求，保溫容器好是水浴箱，可使溫度迅速平衡。各 ELISA 板不應(yīng)疊在一起。為避免蒸發(fā)，板上應(yīng)加蓋，或?qū)迤椒旁诘撞繅|有濕紗布的濕盒中。濕盒應(yīng)該是金屬的，傳熱容易。如用保溫箱，空濕盒應(yīng)預(yù)先放在其中，以平衡溫度，這在室溫較低時(shí)更為重要。加入底物后，反應(yīng)的時(shí)間和溫度通常不做嚴(yán)格要求。如室溫高于 20℃，ELISA 板可避光放在實(shí)驗(yàn)臺(tái)上，以便不時(shí)觀察，待對(duì)照管顯色適當(dāng)時(shí)，即可終止酶反應(yīng)。

（三）洗滌

洗滌在 ELISA 過(guò)程中不是反應(yīng)聚，但卻是決定實(shí)驗(yàn)成敗的關(guān)鍵。洗滌的目的是洗去反應(yīng)液中沒(méi)有與固相抗原或抗體結(jié)合的物質(zhì)以及在反應(yīng)過(guò)程中非特異性吸附于固相載體的干擾物質(zhì)。聚苯乙烯待塑料對(duì)蛋白質(zhì)的吸附作用是普遍性的。因此在 ELISA 測(cè)定的反應(yīng)過(guò)程中應(yīng)盡量避免非特異性吸附，而在洗滌時(shí)又應(yīng)把這種非特異性吸附的干擾物質(zhì)洗滌下來(lái)。在標(biāo)本和結(jié)合物的稀釋液和洗滌液中加入聚山梨酯（吐溫，Tween）一類物質(zhì)即右達(dá)到此目的。聚山梨酯是聚氧乙烯去水山梨醇脂肪酸酯，為非離子型的表面張力物質(zhì)，常作為助溶劑。根據(jù)脂肪酸的種類而對(duì)聚山梨酯編號(hào)，結(jié)合月桂酸的為聚山梨酯 20，在 ELISA 中為常用。它的洗滌效果好，并具有減少非特異性吸附和增強(qiáng)抗原抗體結(jié)合的作用。

洗滌如不*，特別在后一次，如有酶結(jié)合物的非特異性吸附，將使空白值升高。另外，在間接法中如血清標(biāo)本內(nèi)的非特異性 IgG 吸附在固相上而未被洗凈，也將與酶標(biāo)抗體作用而產(chǎn)生干擾。

ELISA 板的洗滌一般可采用以下方法：①吸干孔內(nèi)反應(yīng)液；②將洗滌液注滿板孔；③放置 2 min，略作搖動(dòng)；④吸干孔內(nèi)液，也可傾去液體后在吸水紙上拍干。洗滌的次數(shù)一般為 3～4 次，有時(shí)甚至需洗 5～6 次。

（四）比色

如陰性對(duì)照顏色極淺，在定性測(cè)定中一般可采用目視比色。如用比色計(jì)測(cè)定結(jié)果，準(zhǔn)確性決定于 ELISA 板底的平整與透明度和比色計(jì)的質(zhì)量。