細胞劃痕實驗看似簡單,但標準化的操作是獲得可重復結果的基礎。本文為您詳細拆解從細胞鋪板到定時拍照的每一步,助您建立規范的實驗流程。
材料:6孔板或24孔板、無菌P200/P1000槍頭、無血清培養基、PBS、顯微鏡、記號筆。
細胞:處于對數生長期、狀態良好的細胞。

步驟1:細胞鋪板
在培養板中接種適量細胞,確保密度均勻。
培養至細胞融合度達到90%-100%,形成致密單層(通常需過夜培養)。
步驟2:制造劃痕
使用無菌槍頭(推薦P200),垂直于板底勻速劃線。
技巧:用無菌直尺或板蓋作導向,確保劃痕筆直、寬度一致。
每孔可劃1-2條直線,避免多條交叉劃痕。
步驟3:清洗細胞
吸棄培養基,沿孔壁緩慢加入PBS或無血清培養基。
輕輕晃動后吸棄,重復2-3次,去除刮下的懸浮細胞。
步驟4:加入實驗培養基
更換為無血清或低血清(≤2%)培養基,以排除增殖干擾。
若需藥物處理,此時加入含藥培養基。
步驟5:0小時拍照
立即在顯微鏡下找到劃痕區域,調整焦距至最清晰。
拍攝第-張照片,記錄初始劃痕寬度和位置(建議同時記錄坐標或做標記)。
步驟6:培養與定時拍照
將培養板放回培養箱繼續培養。
在預設時間點(如6h、12h、24h等)取出,于同一位置拍照。
注意:每次拍照前檢查細胞狀態,避免污染。
細胞密度:密度過低會導致劃痕邊緣細胞稀疏,影響遷移;密度過高則可能導致細胞多層,阻礙遷移。
清洗力度:必須輕柔,避免沖走貼壁細胞。
拍照一致性:確保每次拍照的放大倍數、曝光條件一致,便于后續定量分析。
總結:嚴格按照標準化流程操作,能大程度減少實驗誤差,為后續數據分析打下堅實基礎。
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