
細胞培養的微環境,尤其是培養基的組成,在細胞轉染過程中扮演著微妙而關鍵的角色。血清和抗生素這兩個常規培養的必需品,在轉染時卻可能成為“絆腳石"。了解其作用機制并采取正確策略,是優化轉染條件、避免細胞死亡的重要一環。
1. 為什么血清會降低轉染效率?
大多數轉染試劑(如陽離子脂質體、陽離子聚合物)的作用原理是帶正電荷,與帶負電荷的核酸結合形成復合物,再通過細胞膜進入細胞。而血清中含有大量帶負電荷的蛋白質,它們會與轉染試劑競爭結合核酸,從而干擾甚至阻斷轉染復合物的有效形成。
2. 正確的操作策略:分步處理
第-步(無血清配制):在配制DNA與轉染試劑的混合液時,必須使用無血清培養基(如Opti-MEM® I減血清培養基)。這是確保復合物充分、穩定形成的關鍵步驟。
第二步(復合物形成后加血清):當轉染復合物在無血清培養基中形成后(通常孵育15-20分鐘),在將其加入細胞培養孔之前或之后,可以適量添加血清,或直接更換為含血清的完-全培養基,以維持細胞生長,降低應激反應。
1. 抗生素的潛在危害
常規細胞培養中,常添加青霉素-鏈霉素(雙抗)以防止細菌污染。然而,在轉染操作前后,抗生素可能會帶來負面影響:
l 增加細胞毒性:轉染過程本身已對細胞造成壓力,抗生素的加入會進一步加重這種應激,尤其是在轉染后24小時內,細胞膜通透性增加,更易受到抗生素影響,導致細胞死亡率上升。
l 干擾轉染過程:某些抗生素(如某些陽離子性質的抗生素)可能與轉染試劑或核酸發生非特異性相互作用,影響轉染效率。
2. 最-佳實踐:轉染期間暫停使用抗生素
l 推薦方案:在準備轉染(即鋪板)時,使用不含抗生素的完-全培養基培養細胞。在配制轉染復合物、進行轉染操作以及轉染后的最初24小時內,全程避免使用抗生素。
l 后續恢復:轉染24小時后,若細胞狀態良好,可根據實驗需要更換為含抗生素的常規培養基繼續培養。
培養條件是連接細胞與轉染試劑的橋梁。通過在復合物形成階段嚴格使用無血清培養基,以及在轉染敏感期暫停使用抗生素,可以為細胞創造一個低干擾、低應激的微環境,從而最-大化轉染效率,保障細胞活力。
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