
在Western blot中,內參與目的蛋白的分子量差異是一個常被忽視但至關重要的細節。選擇不當可能導致信號干擾或轉膜效率不一致。
目的蛋白與內參的分子量應至少相差5 kDa。主要原因:
l 避免條帶重疊:若二者分子量過近,在膜上位置接近,可能相互干擾或難以剪膜分染。
l 確保轉膜效率匹配:不同分子量的蛋白轉移到膜上的效率不同,差距過小可能無法反映真實比例。
目的蛋白分子量 | 推薦內參 | 說明 |
<30 kDa | β-actin(42 kDa)、GAPDH(36 kDa) | 分子量差距足夠,避免與小蛋白重疊 |
30–50 kDa | β-tubulin(55 kDa)、vinculin(117 kDa) | 避開常用小分子內參,利于雙染或重孵 |
50–100 kDa | β-actin或GAPDH仍可用,但需關注轉膜效率 | 大分子蛋白轉移時間長,需確保內參未過轉 |
>100 kDa | Vinculin、Lamin B等較大分子內參 | 選擇與目的蛋白相近或更大的內參,避免小分子內參過轉損失 |
如果目的蛋白分子量很大(>150 kDa),建議使用濕轉并延長轉膜時間,同時選擇較大分子量的內參(如vinculin),避免小分子內參轉穿膜。
如果同時檢測小分子目的蛋白(<25 kDa)和常規內參,可考慮先切膜,分別孵育抗體,或使用低分子量特異性內參(如Histone H3用于核蛋白)。
選擇內參時,既要關注表達穩定性,也要從分子量角度優化實驗方案,確保檢測結果真實可靠。
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