非蛋白質巰基(Non-protein Sulfhydryl, NPSH)是生物樣本中不與蛋白質結合的游離巰基化合物統稱,包括谷胱甘肽(GSH)、半胱氨酸等,在抗氧化、解毒等生理過程中發揮重要作用。檢測NPSH常用顯色反應法,核心原理是利用巰基(-SH)的還原性,與特定試劑發生化學反應生成有色產物,通過測定產物吸光度實現定量。
常用的試劑為5,5'-二硫代雙(2-硝基苯甲酸)(DTNB),其在堿性條件下與巰基反應,生成黃色的2-硝基-5-巰基苯甲酸(TNB),該產物在412nm波長處有特征吸收峰,吸光度與NPSH濃度呈線性關系,可通過分光光度法計算樣本中NPSH含量。
DTNB溶液:稱取適量DTNB粉末,用磷酸鹽緩沖液(PBS,pH 8.0)溶解,濃度通常為0.1-0.5 mM。DTNB易被氧化,需現配現用或分裝后-20℃避光保存,避免反復凍融。
緩沖液:常用PBS(pH 7.4-8.0)或Tris-HCl緩沖液(pH 8.0),用于維持反應體系pH穩定,需提前配制并滅菌(0.22μm濾膜過濾),4℃保存不超過1周。
標準品:選擇還原型谷胱甘肽(GSH)作為標準品,用緩沖液配制系列濃度(如0-200 μM),現配現用,避免久置氧化。
樣本預處理試劑:根據樣本類型選擇,如細胞樣本需裂解液(含EDTA抑制金屬離子氧化巰基),組織樣本需勻漿緩沖液,血清樣本可直接稀釋。
分光光度計:需支持412nm波長,使用前預熱30分鐘,校準波長準確性(可通過標準溶液驗證吸光度穩定性)。
離心機:用于樣本預處理(如細胞裂解后離心去沉淀,轉速通常10000-12000 rpm,離心時間5-10分鐘)。
移液器與耗材:10-1000 μL量程移液器(校準誤差≤2%),無菌離心管(1.5 mL)、96孔板(石英或聚苯乙烯材質,確保412nm透光性)。
細胞樣本:收集對數期細胞,PBS洗滌2次,加入含1% Triton X-100的裂解液(含5 mM EDTA),冰上裂解30分鐘,12000 rpm離心10分鐘,取上清液待測(上清需無沉淀,避免干擾吸光度)。
組織樣本:取新鮮組織(如肝臟、腎臟),用預冷PBS洗凈-血-漬-,剪碎后按1:5(質量體積比)加入勻漿緩沖液,冰浴勻漿2分鐘,10000 rpm離心15分鐘,取上清待測。
血清/血漿樣本:無需裂解,直接用PBS按1:5-1:10稀釋(根據預期NPSH濃度調整稀釋倍數,避免吸光度超出標準曲線線性范圍)。
在96孔板中,依次加入標準品溶液(0、20、50、100、150、200 μM GSH)各50 μL,每組3個復孔。
每孔加入DTNB溶液50 μL,輕輕震蕩混勻,37℃避光反應15分鐘(反應時間需嚴格控制,過長可能導致非特異性反應)。
在96孔板中加入樣本上清液50 μL,同樣加入50 μL DTNB溶液,37℃避光反應15分鐘(與標準曲線同步反應)。
反應結束后,立即用分光光度計在412nm波長下測定各孔吸光度(空白孔為“緩沖液+DTNB",用于扣除背景)。
以標準品濃度為橫坐標,吸光度為縱坐標,繪制標準曲線(線性回歸方程:y = ax + b,R2需≥0.99)。
根據樣本吸光度(扣除空白后)代入方程,計算樣本中NPSH濃度,再根據樣本稀釋倍數和樣本量(如細胞數、組織質量)換算為“nmol/mg蛋白"或“μmol/L"等最終單位。
試劑穩定性:DTNB溶液暴露于強光或高溫下易分解,配好后需用錫箔紙包裹容器,4℃保存不超過24小時;GSH標準品溶液需現配,若發現溶液變黃(氧化為GSSG),需重新配制。
樣本時效性:巰基易被空氣中的氧氣氧化,樣本處理需在冰上操作,離心后立即測定;若無法立即檢測,可加入還原劑(如1 mM DTT)暫時保護,但需扣除DTT本身對巰基檢測的干擾。
操作環境:避免在通風櫥強氣流下操作(可能加速巰基氧化),反應體系pH需嚴格控制在8.0左右(pH過高會導致DTNB自身水解,pH過低則反應速率減慢)。
儀器校準:分光光度計使用前需用標準溶液(如重鉻酸鉀溶液)校準波長,確保412nm處吸光度準確;96孔板需選擇無劃痕、透光均勻的板,避免因板間差異導致誤差。
吸光度為負值:可能是空白孔吸光度高于樣本孔,需檢查空白組是否僅含緩沖液+DTNB,或樣本中存在強氧化劑(如H?O?)破壞巰基,可在樣本中加入少量還原劑(如1 mM抗壞血酸)中和。
標準曲線線性差:多因標準品配制誤差(如移液不準確)或反應時間不一致,建議使用校準過的移液器,且所有孔同時加入DTNB并計時反應。
重復性差:可能是樣本勻漿或裂解不均勻,需確保組織勻漿充分(可通過鏡檢確認無明顯組織碎片),細胞裂解后離心時間足夠(避免沉淀干擾)。
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