一不小心你就會用到的——熒光原位雜交 (FISH)!
一種實驗室常用的分子技術,堪稱檢測染色體異常的 "金標準" !
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熒光原位雜交
(FISH) 技術

熒光原位雜交 (簡稱 FISH)——一種重要的細胞遺傳學技術,該技術用于獲取空間基因組和轉錄組信息。FISH 廣泛應用于基因組學和細胞生物學研究,以及預防醫學、生殖醫學和腫瘤學等領域的診斷應用。
它是檢測染色體異常的金標準技術!

基本原理
熒光原位雜交是一種用于檢測和定位染色體上特定 DNA 序列的實驗室技術。該技術將個體的全套染色體固定在載玻片上,然后用 "探針" (一小段標記有熒光染料的純化 DNA)進行染色。熒光標記的探針會找到并結合染色體上的對應序列。借助專用顯微鏡,可以觀察到熒光探針結合的染色體及其亞染色體區域。常用來確定結合了熒光探針的 DNA 區域、RNA 分子在染色體及其他細胞器中的定位 (圖 1)。

技術優勢
? 高靈敏度與特異性:可精準檢測并定位目標核酸序列,即便處于復雜細胞環境中,也能有效區分目標序列與非目標序列。
? 支持多色熒光標記:能夠同時檢測多個目標序列,顯著提升檢測效率與準確性。
? 直觀可視化效果:借助熒光顯微鏡,可直接觀察目標序列在細胞或組織內的分布及定位情況。
? 適用范圍廣泛:可應用于分裂與非分裂細胞,能夠檢測隱性基因缺失、基因易位及低水平基因嵌合體,且可在石蠟包埋組織 (PET) 切片上進行操作。
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實驗流程

FISH 實驗的核心步驟為:樣品制備 →預處理 →雜交 →洗滌 →復染與封片 →熒光顯微鏡觀察與分析。
其中,樣品預處理的關鍵在于暴露細胞或組織內的核酸,以確保探針有效結合,這一過程通常涉及蛋白酶消化與梯度乙醇脫水操作。組織預處理步驟見圖 2。

組織預處理完成后,使用疏水屏障筆對載玻片上的組織進行包膜處理 (圈畫),隨后置于蛋白酶溶液中室溫孵育。洗滌后,將組織轉移至臺式培養箱雜交 2 小時,再依次進行擴增步驟。完成 FISH 探針處理后,組織需先洗滌,再用正常馬血清封閉。一抗孵育在 4°C 條件下過夜進行,以確保抗體與抗原的充分結合;二抗孵育則在室溫下持續 2 小時 (圖 3)。

實驗Protocol (供參考[3])
1. 制備標記有 DIG (或 FITC 等其他標記)的反義探針。
2. 對組織進行解剖,用 4% 磺酸鈉溶液固定,并在 20% 蔗糖溶液中進行冷凍保護處理,然后迅速冷凍。
3. 切割冷凍切片,并將其收集在防脫載玻片上。讓其干燥。
4. 將標記探針稀釋至雜交緩沖液中的 1/1000 倍濃度。每張載玻片加入至少 300 微升,然后在上面放置一塊干燥蓋玻片,以使溶液均勻分布在切片上。
5. 在加濕的培養箱中于 65°C 下孵育過夜。
6. 移去蓋玻片,在 MABT 緩沖液中洗滌 2 次,每次 5 分鐘。
7. 接著在 65°C 下用 65°C 洗滌緩沖液洗滌 2 次,每次30 分鐘。
8. 用 MABT 緩沖液洗滌2次,每次 5 分鐘。
9. 用封閉液封閉 1 小時。
10. 將 AP-Anti-Dig 抗體稀釋至封閉溶液中的 1/1500 倍濃度 (對于與過氧化物酶結合的抗體則為 1/500)。每張載玻片加入 500 微升,于 4°C 下孵育過夜。
11. 在 MABT 緩沖液中洗滌 3 次,每次 10 分鐘。
12. 在 pH 9.8 的預顯色緩沖液中短暫洗滌 (2 分鐘即可)。
13. 在 pH 9.8 的顯色緩沖液(含 5% PVA 和 NBT/BCIP) 中于 37°C 下孵育,讓藍色熒光達到到所需的強度 (2 小時至過夜),然后用自來水沖洗以終止反應。
14. 進行脫水處理,并用二甲苯基基質進行封片。
15. 使用熒光顯微鏡觀察樣品,識別并定位熒光信號。
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相信涉及該實驗的小伙伴大部分都會師承同門,先從“打下手" 的小跟班做起,再對著師兄師姐的實驗記錄本 “咔嚓" ,出師,迫不及待親自嘗試一番!
我知道你急,但咱先別急。上述只介紹了組織的處理步驟,如果你的樣本是細胞,還是要乖乖做細胞爬片喔~
表1. FISH探針的主要類型。

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FISH 的技術聯用

mRNA FISH-IHC
mRNA FISH 和 IHC 成像結合可用于表征 AD 模型中補體靶向療法的療效,或結合其他與阿爾茨海默病病理相關的蛋白聚集體 (如 tau、突觸核蛋白) 研究基因表達。
『案例』:結合 FISH 和 IHC 檢測小鼠大腦中淀粉樣斑塊膠質補體表達
補體蛋白可促進阿爾茨海默病 (AD)的神經退行性病變,這類蛋白由包圍 β- 淀粉樣斑塊的膠質細胞分泌。為此,作者提出了一種基于


FISH-Flow
FISH-Flow 技術通過將熒光寡核苷酸與 RNA 雜交,借助流式細胞術實現單細胞層面的熒光定量分析。
『案例』:FISH-Flow 用于定量小鼠和人類細胞中新生和成熟核糖體 RNA。
研究人員開發了一種 FISH-Flow 方法,可用于定量小鼠和人類細胞中新生的 47S rRNA 以及成熟的 18S 和 28S rRNA,該方法還能結合 DNA 染色技術,完成跨細胞周期階段的 rRNA 定量檢測 (如圖 6)。
無論是新生的還是成熟的核糖體 RNA 在細胞中都十分豐富。因此,如圖 7A 所示,針對 rRNA 的 FISH 探針具有較高的信噪比。用 DNA 結合的 DAPI 染料進行染色,可將細胞群體分為 G1/S/G2-M 期,并對細胞周期各階段的 rRNA 進行定量,如圖 7B 所示。


序列熒光原位雜交 (seqFISH)
序列熒光原位雜交 (seqFISH,sequential fluorescence in situ hybridization) 是一種生物分子分析方法,將成像技術與組合分子條形碼技術相結合,利用已知序列的探針,對細胞/組織內的全 RNA 做多輪雜交成像,通過分析探針兩臂區域 barcode 的熒光信號組合來判斷基因 ID,講特定位置信息與基因 ID 關聯生成圖像。seqFISH 方法能夠在原生組織和器官環境中獲得高分辨率的細胞類型、狀態、和鄰域關系信息 (圖 8)。

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諾獎得主的新研究:
smLiveFISH

就在今年!諾貝爾化學獎得主 Jennifer Doudna 教授團隊在Nature Biotechnology 期刊發表了題為 “Single-molecule live-cell RNA imaging with CRISPR–Csm" 的研究論文。該團隊開發出一種單分子活細胞熒光原位雜交技術 (Single-molecule live-cell fluorescence in situ hybridization,smLiveFISH)。
smLiveFISH
【單分子活細胞熒光原位雜交技術】
該技術借助嗜熱鏈球菌來源的 RNA 靶向 III-A 型 CRISPR-Csm 系統及多重向導RNA,使研究人員能夠在包含原代細胞在內的多種細胞類型中,直接且高效地實現單個 RNA 分子的可視化,進而追蹤不同種類活細胞中單個 mRNA 分子的動態軌跡 (圖 9)。

圖 9. smLiveFISH 系統的工作示意圖[7]。
如圖所示,GFP 標記的 Csm 復合物標記單個 NOTCH2 mRNA (圖 10 a 和 b 左圖),smFISH 探針標記 NOTCH2 mRNA (圖 10 a 和 b 中圖),兩者的疊加圖像顯示共定位情況 (圖 10 a 和 b 右圖)。Csm 復合物病灶與 smFISH 病灶的共定位比例、以及具有 Csm 復合物標記病灶的轉染細胞比例均可進行量化 (圖 10c-d)。

通過雙色成像驗證,Csm 復合物成功標記內源性 NOTCH2 mRNA,并在多種細胞類型中實現穩健檢測,且未對 mRNA 的穩定性、衰變速率、定位及蛋白質表達產生影響。此外,smLiveFISH 技術也成功標記 MAP1B mRNA,通過共定位實驗驗證了信號的準確性,同時揭示其在細胞外圍富集的空間分布特征,且同樣未干擾 mRNA 的穩定性、衰變速率、定位及蛋白質表達,進一步證明該技術適用于不同 RNA 分子的可視化研究。

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參考文獻:
[1] Debnath, et al. Molecular Diagnostics: Promises and Possibilities.Springer.2010;153-170.
[2] Dereli AS, et al. Combining Multiplex Fluorescence in situ Hybridization with Fluorescent Immunohistochemistry on Fresh Frozen or Fixed Mouse Brain Sections. J Vis Exp. 2021 Jun 25;(172).
[3] N.P. Pringle. et al. In situ hybridization protocols.
[4] Rao S, et al. Protocol for detection of glial complement expression in relation to amyloid plaques in mouse brain with combined FISH and IHC. STAR Protoc. 2024 Dec 20;5(4):103388.
[5] Antony C, et al. FISH-Flow to quantify nascent and mature ribosomal RNA in mouse and human cells. STAR Protoc. 2023 Sep 15;4(3):102463.
[6] Chen A, et al. Spatiotemporal transcriptomic atlas of mouse organogenesis using DNA nanoball-patterned arrays. Cell. 2022 May 12;185(10).
[7] Xia C, et al. Single-molecule live-cell RNA imaging with CRISPR-Csm. Nat Biotechnol. 2025 Feb 18.


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