DNA聚合酶在新DNA鏈合成中扮演著重要的角色，是PCR反應的組成部分。因此，充分了解聚合酶的特點以及高級DNA酶今后的發展方向，對于將PCR方法推廣到各種生物學實驗應用至關重要。自從在早期PCR實驗中開始使用 賽默飛Taq DNA DNA聚合酶至今，其特異性、熱穩定性、保真度和合成能力得到了明顯的改進。以下就為您介紹這些改進型DNA酶的特點，以及它們與提高PCR實驗效果的密切關系。

本頁內容

l 特異性

l 熱穩定性

l 保真度

l 合成能力

特異性

非特異性擴增是PCR反應最主要的障礙之一，因為它會顯著降低目的基因擴增的產率和靈敏度，從而影響擴增結果的合理解釋和下游實驗應用的成功。而DNA聚合酶經常會延伸錯配的目的基因和引物二聚體，這是非特異性擴增的常見來源。如何減少非特異性擴增？方案之一是在冰上配制PCR反應。這樣有助于將DNA聚合酶的活性保持在低水平，但在PCR開始之前依然可能會合成不需要的產物。另一個辦法是將DNA聚合酶的加入時間推遲到第一個循環的退火步驟。因為只有在90℃以上的初始變性步驟之后才能開始擴增，所以該技術被稱為“熱啟動”。

盡管手動熱啟動程序能夠有效改善特異性，但是其過程不僅費時費力，而且會增加樣品污染和降低可重復性的風險。1994年，具有真正熱啟動特性的TaqDNA聚合酶問世[1,2]，通過在室溫下配制反應時將特異性抗體與聚合酶結合來抑制其活性。在初始高溫變性步驟（如，>90℃）階段，結合的抗體失活，從而激活DNA聚合酶（圖1）。

圖 1.基于抗體的熱啟動DNA聚合酶及其在PCR反應體系中的激活提高了特異性。

此外，變性步驟還可能分離反應配制過程中形成的錯配序列和引物二聚體，從而防止它們在后續退火和延伸過程中被DNA聚合酶擴增。這樣，熱啟動DNA聚合酶便可降低非特異性擴增，提高產率，可實現室溫下配制反應體系，方便用于高通量實驗應用（圖2-4）。

圖 2：非熱啟動和熱啟動DNA聚合酶的PCR結果。使用熱啟動DNA聚合酶，可提高目標擴增子的產率并減少非特異性擴增。

圖 3.熱啟動DNA聚合酶適用于室溫下配制反應體系，可用于高通量應用。準備PCR反應并在室溫下孵育0、24和72小時， 然后放置到熱循環儀中。即使在室溫配制反應體系72小時后依然能夠高特異性地擴增來自人類gDNA的2 kb片段，表明熱啟動DNA聚合酶可適用于大規模實驗。

圖 4.聚合酶活性對比：(A)真正的“熱啟動”DNA聚合酶和(B) “暖啟動”DNA聚合酶。在60°C（恒溫）下檢測60分鐘內的聚合酶活性。在熱激活測試（藍色曲線）中，在 94°C下對聚合酶加熱處理2分鐘，使抗體與聚合酶解離。不使用熱激活（紅色曲線）時，真正的熱啟動DNA聚合酶無法檢測到聚合酶活性，而暖啟動酶可在60°C被激活，因此不適用于熱啟動實驗應用。

作為抗體的替代物，通過對酶活性位點進行熱不穩定化學修飾，或者使用適配子等小分子縮短活化時間，也能夠獲得熱啟動性能。無論是否選擇熱啟動技術，在非加熱條件下有效阻斷DNA聚合酶活性，對確保特異性而言都至關重要。（圖4）

熱穩定性

由于熱循環是DNA擴增重復鏈式反應條件的關鍵特征，因此，所使用DNA聚合酶的熱穩定性非常重要。盡管最初來自于嗜熱菌菌株的 Taq DNA 聚合酶可耐受相對較高的溫度，但是其半衰期在90°C以上時明顯縮短。當使用 長時間高溫 使具有二級結構和富含GC序列的DNA變性時，這一缺陷便成為一大難題。同樣，在擴增長片段模板時，需要更大量的Taq DNA 聚合酶或補充Taq DNA聚合酶，以供長時間孵育。因此，從超嗜熱菌分離的DNA聚合酶具有更高的熱穩定性，將有助于克服這些挑戰。

Pfu DNA聚合酶是一種為大家所熟知的超耐熱酶，來自于水熱環境中的超嗜熱古細菌 Pyrococcus furiosus 。在95°C下，Pfu聚合酶的穩定性能比 Taq 聚合酶高20倍[3]。其它常見的超耐熱DNA聚合酶包括來自古細菌 Thermococcus 和 Pyrococcus 的KOD和GBD等。

盡管古細菌DNA聚合酶的熱穩定性強，但它們在某些方面也具有一定局限性。例如，超耐熱 Pfu DNA 聚合酶的合成能力較低（與 Taq DNA聚合酶相比），因此合成DNA的速度較慢。此外，古細菌DNA聚合酶無法擴增含有尿嘧啶的DNA模板，因為其存在尿嘧啶結合區域作為一種DNA修復機制[4,5]。含尿嘧啶的DNA序列是 防止PCR 殘余污染 和經亞硫酸氫鹽轉化進行 基因座甲基化分析 的基礎。

保真度

DNA聚合酶的校正能力決定了保真度，會影響DNA序列復制的準確性。因此，高保真DNA聚合酶就是具有強校正活性的酶。DNA聚合酶準確復制DNA序列（即獲得無錯誤序列）的能力對分子克隆、測序和定點突變等實驗應用至關重要（應用指南：定點突變）。

其校正活性基于其 3′ → 5′核酸外切酶活性，可校正錯誤插入的核苷酸。DNA聚合酶上的核酸外切酶活性位點與其5′→ 3′聚合酶活性位點是分離的（圖5）。當錯配的核苷酸插入聚合結構域，DNA合成將因不合適的堿基配對動力學而暫停。暫停期間，DNA聚合酶將切除錯配的核苷酸并用正確的核苷酸替換[6]。

圖 5.DNA聚合酶及其 5′→3′聚合酶結構域和3′→5′核酸外切酶結構域（基于 大腸桿菌 DNA聚合酶I的結構）。

DNA聚合酶的保真度檢測方法多種多樣，如菌落篩選測定、Sanger測序和下一代測序[7-10]。傳統的菌落篩選方法，是將PCR擴增片段（ lac 基因的）克隆到質粒中。使用 藍白斑篩選檢測重組質粒轉化的菌落。lac 基因插入片段上的突變（可能由于PCR過程中的錯誤復制產生）導致lacZ功能喪失，形成白色菌落。另一方面，無PCR錯誤的 lac 插入片段則形成藍色菌落。使用Sanger測序對克隆的PCR片段進行測序，可檢測DNA聚合酶的錯誤率。利用下一代測序，可直接對PCR擴增子進行測序（圖 6）。

圖 6.檢測DNA聚合酶保真度的常用方法。

DNA聚合酶的保真度常用錯誤率的倒數表示（保真度=1/錯誤率），指發生錯配的核苷酸數與聚合的總核苷酸數的比值。因此，DNA聚合酶保真度高度依賴于PCR擴增子長度和PCR擴增循環數。為了準確對比不同聚合酶的保真度，必須使用相同的方法和循環參數進行檢測。

通常，保真度表示為與 Taq DNA 聚合酶保真度的相對值。天然存在的校正DNA聚合酶（如 Pfu 和KOD）的保真度約為 Taq聚合酶的10倍。但是，“下一代”高保真DNA聚合酶經過定向改造，具有超高的保真度， >約為 Taq 聚合酶的50-100倍（圖7）。使用這些酶，錯配率可低至幾百萬分之一。

圖 7.利用下一代測序方法，對比常用的高保真酶。

合成能力

酶的合成能力可定義為在一次結合中處理的核苷酸數量。DNA聚合酶的合成能力通常反應了合成率和合成速度，以及酶與底物的親和力。合成能力高的DNA聚合酶適用于擴增長模板、具有二級結構和富含GC的序列，以及存在肝素、木聚糖和腐殖酸等PCR抑制劑的血液和植物組織樣品（圖8）。

圖 8.具有高合成能力的DNA聚合酶能夠有效擴增(A)來自人類gDNA的不同長度目標序列，(B)各種GC含量（無增強子）的模板以及(C)來自含有常見PCR抑制劑的樣品的目的片段。這些實驗使用了具有高合成能力的 Invitrogen™ Platinum™ SuperFi™ DNA 聚合酶 。

早期的高保真DNA聚合酶具有較強的核酸外切酶活性，所以合成能力較低，且會減慢聚合速度。因此，其擴增較長目標DNA的速度明顯減慢。例如，校正 Pfu DNA聚合酶的保真度是 Taq DNA聚合酶的7倍，但其合成率還不到 Taq聚合酶的一半。使用另一個蛋白質的強DNA結合域對DNA聚合酶進行改造后，實現了合成能力的突破，同時不影響聚合酶活性（圖9）[10]。這些改進型DNA聚合酶的合成能力提高了2-5倍。

圖 9.DNA聚合酶的合成能力。(A)高合成能力的DNA聚合酶與其底物的親和力更高，每次結合能引入更多核苷酸。(B)含有DNA結合域的DNA聚合酶序列示意圖（Pol=聚合酶結構域， 3-′5′ exo = 3′→ 5′核酸外切酶結構域，DBD=DNA結合域，N=N末端，C=C末端）。

總之，DNA聚合酶的四大特點——特異性、熱穩定性、保真度和合成能力——使這些酶具有多種功能，進一步拓展了它們在PCR中的應用。酶的 特異性 可確保獲得高產率的目標PCR產物，同時盡量減少在克隆和定量等下游實驗應用中的潛在問題。高合成能力和超耐熱性 克服了擴增二級結構、富含GC的序列以及長DNA片段的困難。此外，提高合成能力使酶能夠耐受DNA樣品中天然存在的PCR抑制劑。最后，高保真性提高了序列復制的準確性。

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