JM110 感受態細胞說明書

（Rev.A）

保 存：-80℃保存，運輸為干冰包裝。自收貨之日起液氮保存至少一年，-80℃保存至少 6 個月。

產品簡介：

本公司生產的JM110感受態細胞是采用大腸桿菌JM110菌株經特殊工藝制備得到，可用于DNA的化學轉化。使用pUC19 質粒檢測，轉化效率zui高可達 2×10⁷cfu/μg，-80℃保存 3-5 個月轉化效率不發生改變。

基因型:recAsupE44endA1 hsdR17 gyrA96relA1 thi Δ(lac-proAB) F’[traD36 proAB+ lacIq lacZΔM15]

特 點: 一種琥珀抑制型 F’重組缺陷菌株。支持 M13 噬菌體載體的生長，對轉染的 DNA 有修飾作用，但 無限制作用。該菌株中的 F’帶有 lacZΔM15，后者使得與在 λZAP 中編碼的 β-半乳糖 苷酶氨基端進行 α-互補， 可用于藍白斑篩選。

操作方法：（以下操作均按無菌條件的標準進行）

1. 將感受態細胞置于冰上融化，以下實驗以 100μl 感受態細胞為例。
2. 向感受態細胞懸液中加入需轉化的目的 DNA，注意目的 DNA 的體積不要超過感受態細胞懸液體積的十分之一，輕輕旋轉離心管以混勻內容物，冰浴放置 30 分鐘。
3. 將離心管置于 42℃水浴中熱擊60-90秒，然后快速轉移到冰浴中放置 2-3 分鐘，注意不要搖動離心管。
4. 向離心管中加入 900μl 無菌無抗的 SOC 或 LB 培養基，37℃ 180 rpm 振蕩培養 30分鐘到1小時。目的是使質粒上相關的抗性標記基因表達，使菌體復蘇。
5. 取適量已轉化的感受態細胞涂布含相應抗生素的 SOC 或 LB 平板，37℃倒置培養 12-16小時或6-8小時培養。涂布用量可根據具體實驗來調整，如轉化的 DNA 總量較多，可取200μl 左右的轉化產物涂板；反之，如轉化的 DNA 總量較少，可4℃，2500 g離心5min后，棄去上清約700 μl，用剩余約200-300 μl 的轉化產物涂板。過多菌液可以抑制細菌生長。

注意事項：

1. 感受態細胞應保存在-80℃，不可反復凍融，否則其轉化效率將會降低。
2. 實驗過程中應嚴格無菌操作，防止其它 DNA 或雜菌的污染，避免為以后的篩選、鑒定帶來影響。
3. 轉化時，轉化效率與外源 DNA 的濃度在一定范圍內成正比，但當加入的外源 DNA 量過多或體積過大反而會降低轉化效率。轉化時 DNA 體積要小于感受態細胞體積的十分之一。
4. 轉化率的計算：轉化率＝產生菌落的總數/鋪板 DNA 總量。
5. 為防止轉化實驗不成功，可以保留部分連接產物，以重新轉化，將損失降到zui低。

感謝您對我們公司的支持與信任！

使用我公司產品時，如有任何實驗相關的問題，請致郵：cs_bioswamp。我們會*時間協助解決，謝謝！