聯系電話
- 聯系人:
- 高杰
- 電話:
- 021-34661276
- 手機:
- 15821073967
- 售后:
- 15301693058
- 傳真:
- 021-34661276
- 地址:
- 上海市閔行區元江路5500號第1幢5658室
- 網址:
- www.yajimall.com
掃一掃訪問手機商鋪
-
描述:福爾馬林固定石蠟包埋組織在生物醫學研究中被廣泛使用,但是從石蠟包埋組織中提取蛋白由于甲醛會介導分子交聯而變得異常困難,傳統方法從石蠟包埋組織中提取蛋白需要使用有機溶劑重復脫蠟和水化,然后在高溫下或不可避免的超聲處理后提取蛋白。這些方法雖然在某些情況下是比較有效的,但是操作繁瑣,需要消耗3-4小時。MinuteTM石蠟包埋組織蛋白提取試劑盒提供了一種簡便,快速的方法,不需有機溶劑脫蠟。整個過程可以在不到1小時的時間內完成,蛋白產量可以高達2-3毫克/毫升。應用:提取的蛋白可用于SDS-PAG
-
1MinuteTM無表面活性劑的厚壁微生物總蛋白提取試劑盒目錄號YD-016描述:從厚壁微生物中提取蛋白質是實驗室常見的實驗操作,傳統的操作方法非常復雜,冗長,不可控。本試劑盒提供了一種無表面活性劑,快速,可靠的從厚胞壁微生物提取總蛋白的方法。可以從酵母,絲狀真菌,革蘭氏陽性和陰性菌,蟲卵,微藻中等提取總蛋白。試劑盒提供了優化的無表面活性劑和EDTA的緩沖液。試劑盒所有步驟在單一管內完成,時間<10分鐘,得率可達2-4mg/ml.可用于對數生長期和靜止生長期微生物。提供的原材料做夠做50次提取。
-
MinuteTM新鮮/冷凍組織單細胞懸液分離試劑盒目錄號CS-031描述:從新鮮和/或冷凍組織中獲得優質細胞懸浮液是后續實驗的重要步驟,如流式細胞術分析(FACS)和核酸純化。細胞懸浮液可以通過以下一種或三種方法從組織中分離出來:化學組織分離、酶消化和物理分離。許多方法都過于繁瑣和費時。最重要的是,組織中尤其是冷凍組織中的細胞,通常被破壞,表現出低完整性和低活性。很難從結締組織含量較高的冷凍樣品中獲取得高活性的細胞懸液,例如肝、腎、腦組織等。我們開發的這款試劑盒,簡單、快速、高效、無需特殊儀器,
-
MinuteTM凝膠中蛋白/核酸提取試劑盒目錄號PN-019描述:被動洗脫和電洗脫是從聚丙烯酰胺/瓊脂糖凝膠中提取蛋白質或核酸的常用方法。被動洗脫通常需要過夜孵育,洗脫的蛋白濃度非常低,需要進一步濃縮。電洗脫(30-120分鐘)比被動洗脫快但是需要特殊的電洗脫儀,對于分子量較大的(70KD)蛋白無法高效提取,電洗脫液中通常含有表面活性劑和其他化學物質會影響下游應用。我們的試劑盒可以快速的從凝膠中提取蛋白/核酸,無需特殊儀器,操作時間分鐘。根據凝膠染色的方法,洗脫緩沖液可以是含有表面活性劑的緩沖液
-
MinuteTM內體及細胞組分分離試劑盒目錄號ED-028描述:初級內體(EE)是次級成熟內體的起點,初級內體主要是由內吞的囊泡相互融合形成。初級內體不僅僅通過網格蛋白介導的信號通路接受胞吞物,還有其他許多通路。胞吞機制除了在維持正常細胞生理中起到重要作用,還在阿爾茲海默病和遺傳性溶酶體儲積癥等許多疾病中發揮了很大作用。傳統分離內體的方法是采用密度梯度超速離心法,需要大量起始原材料,方法繁瑣費時。MinuteTM內體分離試劑盒基于離心管柱法,快速簡單,僅需要少量的培養細胞或者毫克級的組織樣品。本
-
實驗結論:不同的提取方法所得到的蛋白質量(得率,雜質,蛋白譜)有明顯的差異,得率低,雜質多,蛋白譜差異都會影響下游實驗,出現結果異常。PS:BCA檢測時,標曲對照一定要加入裂解液進行檢測,以免出現偏差。(我們發現有裂解液加入BCA工作液就變色的情況哦~)總結:WB樣品制備的關鍵:獲取最大的蛋白質溶解度,減少蛋白質損失以及盡量去除雜質。獲取給定樣品中完整的蛋白質圖譜,要真實的反映所有蛋白質種類和比例。獲得真實意義上的總蛋白,并非RIPA可溶性組分。柱式法蛋白提取MinuteTM動物細胞/組織樣品總
-
人載脂蛋白E(apo-E)ELISA檢測試劑盒說明書2022更新
人(Human)載脂蛋白E(apo-E)ELISA檢測試劑盒使用說明書檢測原理試劑盒采用雙抗體一步夾心法酶聯免疫吸附試驗(ELISA)。往預先包被載脂蛋白E(apo-E)抗體的包被微孔中,依次加入標本、標準品、HRP標記的檢測抗體,經過溫育并*洗滌。用底物TMB顯色,TMB在過氧化物酶的催化下轉化成藍色,并在酸的作用下轉化成最終的黃色。顏色的深淺和樣品中的載脂蛋白E(apo-E)呈正相關。用酶標儀在450nm波長下測定吸光度(OD值),計算樣品濃度。樣品收集、處理及保存方法1.血清:使用不含熱原 -
一直都在做蛋白研究,但是樣品制備中的小細節你都了解嗎?這里為大家整理了蛋白樣品制備中大大小小的常見問題,一起來學習吧!Q貼壁細胞收集是刮下來好還是胰酶消化好?A兩種方式都是可行的,各有利弊。不必擔心刮刀收集會刮壞細胞,胰酶消化的程度掌握不好,也會讓細胞破損。胰酶消化可能會對某些膜蛋白產生影響,刮刀收集效率會略低,可根據自己的實驗來選擇細胞收集的方式。做總蛋白提取時,可選擇直接在器皿中進行裂解,無需提前收集。PS:使用刮刀收集時,可加入PBS幫助收取細胞。Q所有WB實驗都用總蛋白就可以完成嗎?A當

