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永生化小鼠顱縫細胞 (iMSu) 是一種具有重要研究價值的細胞系,以下是其詳細的操作使用指南:
培養(yǎng)基配置 :一般采用 DMEM/F12 培養(yǎng)基,添加 10% 胎牛血清(FBS)以及 1% 青霉素 - 鏈霉素溶液。
培養(yǎng)容器 :建議使用經(jīng)特殊處理的培養(yǎng)容器,如 PriCoat™ T25 培養(yǎng)瓶或 Applied Cell 細胞外基質(zhì)涂層培養(yǎng)瓶。
培養(yǎng)環(huán)境 :將培養(yǎng)瓶置于 37℃、5% CO? 的培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng),濕度保持在 70%-80%。
凍存操作 :使用含 10% DMSO 的培養(yǎng)基或?qū)iT的凍存液作為凍存介質(zhì)。將細胞懸浮液分裝于凍存管中,每管 1×10? 個細胞左右。凍存時,可采用程序降溫法,先置于 4℃ 30 分鐘,再轉移至 - 20℃ 30 分鐘,最后放入液氮中長期保存。也可使用凍存盒,將凍存管放入凍存盒中,放置 - 80℃冰箱過夜,之后轉入液氮保存。
復蘇流程 :從液氮中取出凍存管,迅速放入 37℃水浴中快速解凍,同時輕輕搖動凍存管以加速解凍過程。解凍后的細胞懸液應立即轉移至含有適量預溫培養(yǎng)基的離心管中,輕輕吹打混勻后,以 125xg 的速度離心 5 分鐘。棄去上清液,用新鮮的培養(yǎng)基重懸細胞沉淀,將細胞懸液接種到預先準備好的培養(yǎng)瓶中,加入適量的培養(yǎng)基,置于 37℃、5% CO? 的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
傳代時機 :當細胞在培養(yǎng)容器中的生長密度達到 80% 左右時,即可進行傳代操作。一般來說,每周可進行 1 至 2 次傳代,但具體的傳代頻率還需根據(jù)細胞的生長狀態(tài)和實驗需求進行調(diào)整。
傳代步驟 :首先吸除培養(yǎng)瓶中的舊培養(yǎng)基,加入適量的 PBS 潤洗細胞,以去除殘留的培養(yǎng)基和雜質(zhì)。然后加入 0.25% 的胰蛋白酶 - EDTA 溶液,在顯微鏡下觀察細胞,待細胞大部分脫落時,加入等體積的培養(yǎng)基終止胰蛋白酶的作用。將細胞懸液轉移至離心管中,以 125xg 的速度離心 5 分鐘,棄去上清液,用新鮮的培養(yǎng)基重懸細胞沉淀,按照 1:2 至 1:4 的比例將細胞懸液分裝到新的培養(yǎng)瓶中,并加入適量的培養(yǎng)基,繼續(xù)進行培養(yǎng)。
無菌操作 :在整個操作過程中,包括培養(yǎng)、凍存、復蘇和傳代等環(huán)節(jié),都必須嚴格遵守無菌操作原則,以防止微生物的污染,確保細胞的健康生長。
細胞狀態(tài)監(jiān)測 :定期觀察細胞的形態(tài)和生長狀態(tài),記錄細胞的生長曲線,及時發(fā)現(xiàn)并處理可能出現(xiàn)的問題,如細胞污染、生長異常等。
培養(yǎng)基更換 :根據(jù)細胞的生長速度和實驗需求,一般每 2 至 3 天更換一次培養(yǎng)基,以提供充足的營養(yǎng)物質(zhì),維持細胞的良好生長狀態(tài)。
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