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免疫組化結果常見問題分析(一)結果陰性的原因1.抗體濃度和質量問題以及抗體來源選擇錯誤；2.抗原修復不全，換修復液或加強修復；3.組織切片本身這種抗原含量低，設陽性對照片；4.血清封閉時間過長；DAB孵育時間過短；6.細胞通透不全，抗體未能充分進入胞內參與反應。(二)非特異性染色的原因（著色一片黃/背景深）1.抗體孵育時間過長，抗體濃度；2.多抗易出現非特異性，可選擇單抗；3.內源性過氧化物酶和生物素滅活不夠；4.非特異性組分與抗體結合，延長血清封閉時間；5.DAB孵育時間過長或濃度過高；6.P
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腺相關病毒屬于微小病毒科(parvovirus)，為無包膜的單鏈線狀DNA病毒，基因組大小約4.7kb。利用腺相關病毒可以將外源基因轉入動物組織和細胞中，具有安全性高、免疫原性低、宿主范圍廣、表達穩定等多種優點，廣泛應用于動物體內研究。腺相關病毒血清型眾多（12種），不同血清型對不同組織親和性不同，因此在具體科學研究中，以下問題往往困擾著廣大科研工作者：選擇何種血清型？如何注射？注射多少病毒？注射部位如何選擇？注射多久檢測？本文就常見的注射部位（大腦、視網膜、肝臟、心臟和動脈、肺臟、腎臟、肌肉、
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PCR反應的大特點是具有較大擴增能力與*的靈敏性，但令人頭痛的問題是易污染，極其微量的污染即可造成假陽性的產生.污染原因(一)標本間交叉污染:標本污染主要有收集標本的容器被污染，或標本放置時，由于密封不嚴溢于容器外，或容器外粘有標本而造成相互間交叉污染;標本核酸模板在提取過程中，由于吸樣槍污染導致標本間污染;有些微生物標本尤其是病毒可隨氣溶膠或形成氣溶膠而擴散，導致彼此間的污染.(二)PCR試劑的污染:主要是由于在PCR試劑配制過程中，由于加樣槍、容器、雙蒸水及其它溶液被PCR核酸模板污染.(三
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提起膜蛋白，浮現在廣大從事蛋白研究的科研工作者腦海中的是兩點：1.膜蛋白功能的重要性。2.膜蛋白研究的困難性。*，膜蛋白在細胞間接觸、表面識別、信號轉導、酶活性和運輸方面都扮演著重要的角色。由于它們功能多樣，也就成為理想的藥物靶點。然而，膜蛋白的生化和結構研究一直都很緩慢。ProteinDatabase的統計數據表明，在成功解析出三維結構的蛋白中，膜蛋白只占1%，這與膜蛋白占總蛋白的1/3的總量的差別巨大。由此也可以看出膜蛋白研究確實困難重重。圖1.利用QIAgenes優化序列，昆蟲細胞體外進行
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小鼠尿微量白蛋白(ALB）酶聯免疫分析（ELISA）試劑盒使用說明書本試劑僅供研究使用目的：本試劑盒用于測定小鼠血清，血漿,相關液體樣本尿微量白蛋白(ALB）含量。實驗原理：本試劑盒應用雙抗體夾心法測定標本中小鼠尿微量蛋白(ALB)水平。用純化的小鼠尿微量蛋白(ALB)抗體包被微孔板，制成固相抗體，往包被單抗的微孔中依次加入尿微量蛋白(ALB)，再與HRP標記的ALB抗體結合，形成抗體-抗原-酶標抗體復合物，經過*洗滌后加底物TMB顯色。TMB在HRP酶的催化下轉化成藍色，并在酸的作用下轉化成終
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一、實驗目的與原理蛋白質在聚丙烯酰胺凝膠中電泳時，它的遷移取決于它所帶電荷以及分子大小和形狀等因素。1967年Shapiro等人發現，如果在聚丙烯酰胺系統中加入陰離子去污劑十二烷基磺酸鈉（SDS），大多數蛋白質能與SDS按一定比例結合，即每克蛋白質結合1.4g的SDS－復合物都帶上相同密度的負電荷，它的量大大超過了蛋白質分子原有的電荷量，因而消除了蛋白質原有的電荷差別，使蛋白質分子電泳的遷移率主要取決于本身的分子量，而與蛋白質所帶的電荷無關，在一定條件下，蛋白質的分子量的對數與電泳遷移率間呈負相
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（一）原理凡鹽析所獲得的粗制蛋白質（鹽析得到的IgG）中均含有硫酸銨等鹽類，這類將影響以后的純化，所以純化前均應除去，此過程稱為“脫鹽”（desalthing）。脫鹽常用透析法和凝膠過濾法，這兩種方法各有利弊。前者的優點是透析后析品終體積較小，但所需時間較長，且鹽不易除盡；凝膠過濾法則能將鹽除盡，所需時間也短，但其凝膠過濾后樣品體積較大。所以，要根據具體情況選擇使用。前實驗中樣品體積較小，凝膠達濾后樣品體積不會太增加，所以選用凝膠過濾法。（二）試劑與器材（1）SephadexG-25。（2）0.
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大鼠表皮生長因子(EGF)酶聯免疫分析（ELISA）試劑盒使用說明書本試劑僅供研究使用目的：本試劑盒用于測定大鼠血清，血漿及相關液體樣本中表皮生長因子(EGF)的含量。實驗原理：本試劑盒應用雙抗體夾心法測定標本中大鼠表皮生長因子(EGF)水平。用純化的大鼠表皮生長因子(EGF)抗體包被微孔板，制成固相抗體，往包被單抗的微孔中依次加入表皮生長因子(EGF)再與HRP標記抗體結合，形成抗體-抗原-酶標抗體復合物，經過*洗滌后加底物TMB顯色。TMB在HRP酶的催化下轉化成藍色，并在酸的作用下轉化成終
